МОРФОЛОГІЧНА ОЦІНКА ДІАБЕТИЧНОЇ РЕТИНОПАТІЇ

Олександр Слободян; Ярослав  Пенішкевич

doi:10.24061/1727-0847.21.4.2022.51

Автор(и)

Олександр Слободян
Ярослав Пенішкевич

DOI:

https://doi.org/10.24061/1727-0847.21.4.2022.51

Ключові слова:

товщина хоріоідеї; діабетична ретинопатія; оптична когерентна томографія

Анотація

Представлений літературний огляд поточного розуміння та нових уявлень про патофізіологію діабетичної ретинопатії, морфологiю, а також клінічні методи дiагностики i лікування пацієнтів даної патології. Проведене морфологічне дослідження товщини хоріоідеї у хворих на цукровий діабет за допомогою спектрально- доменної оптичної когерентної томографії з метою аналізу морфологічних змін судин хоріоїдеї та їхньої ролi в механізмі діабетичної ретинопатії, яке виконували на очах 203-х учасників із діабетом і на очах 48-ми здорових людей. Товщину хоріоідеї в ділянці фовеального ураження вимірювали за допомогою оптичної когерентної томографії з розширеним зображенням. Учасники були згруповані відповідно до ступеня діабетичної ретинопатії: відсутність діабетичних змін, легка або
помірна, або тяжка непроліферативна, або проліферативна діабетична ретинопатія. Параметри дослідження включали історію, вік, осьову довжину, внутрішньоочний тиск, центральну товщину сітківки, рівень глюкози натщесерце та артеріальний тиск. У результаті товщина субфовеальної хоріоідеї була меншою в очах з непроліферативною або проліферативною діабетичною ретинопатією, ніж у нормальних очах (p<0,01). Однак не було різниці між очима з непроліферативною та проліферативною діабетичною ретинопатією або між очима без діабетичних змін і контрольною групою. Очі з макулярним набряком не показали істотної різниці в товщині судинної оболонки порівняно з очима з нормальними контурами макули. Отже, центральна судинна оболонка стоншується, коли очі демонструють діабетичні зміни на сітківці. Проте наявність діабетичного макулярного набряку або проліферативних змін не пов’язано з більш вираженим витонченням хоріоїду.

Посилання

Hammer SS, Busik JV. The Role of Dyslipidemia in Diabetic Retinopathy. Vision Res. 2017;139:228-36. doi: 10.1016/j.visres.2017.04.010.

Natrus LV, Haiova LV, Bykhovets' MIu, Osadchuk YuS, Konovalov SE. Znachennia rehuliatornykh vplyviv na lipidnyi metabolizm pry uskladnenomu tsukrovomu diabeti 2-ho typu [The significance of regulatory influences on lipid metabolism in complicated type 2 diabetes]. Fiziolohichnyi zhurnal. 2020;66(1):25-34. (in Ukrainian).

Bykhovets' M. Informatsiine znachennia biokhimichnykh markeriv dlia otsinky vtorynnoho hiperhlikemichnoho dysmetabolizmu u khvorykh na diabetychnu retynopatiiu ta tsukrovyi diabet 2 typu [Informative value of biochemical markers for assessment of secondary hyperglycemic dysmetabolism in patients with diabetic retinopathy and type 2 diabetes]. East European Scientifi c Journal (Warsaw, Poland). 2019;9(49)/1:19-25. (in Ukrainian).

Petrenko OV, Natrus LV, Tavartkiladze K. Petrenko OV, Natrus LV, Tavartkiladze K. Osoblyvosti vmistu zhyrnykh kyslot u klitynakh krovi u khvorykh na diabetychnu retynopatiiu[Features of blood cells’ fatty acids content in patients with diabetic retinopathy]. Arkhiv oftal'molohii Ukrainy. 2017;3(19):54-60. (in Ukrainian).

Mahendran Y, Ågren J, Uusitupa M, Cederberg H, Vangipurapu J, Stančáková A, et al. Association of erythrocyte membrane fatty acids with changes in glycemia and risk of type 2 diabetes. Am J Clin Nutr. 2014;99(1):79-85. doi: 10.3945/ajcn.113.069740.

Matthäus C, Lahmann I, Kunz S, Jonas W, Alves A, Lehmann M, et al. EHD2-mediated restriction of caveolar dynamics regulates cellular lipid uptake. 2020 bioRxiv. 511709. doi: https://doi.org/10.1101/511709.

Koehrer P, Saab S, Berdeaux O, Isaïco R, Grégoire S, Cabaret S, et al. Erythrocyte phospholipid and polyunsaturated fatty acid composition in diabetic retinopathy. PLoS One. 2014;9(9):e106912. doi: 10.1371/journal.pone.0106912.

Harris WS, Luo J, Pottala JV, Margolis KL, Espeland MA, Robinson JG. Red Blood Cell Fatty Acids and Incident Diabetes Mellitus in the Women’s Health Initiative Memory Study. PLoS One. 2016;11(2):e0147894. doi: 10.1371/journal.pone.0147894.

Bukowiecka- Matusiak M, Burzynska- Pedziwiatr I, Sansone A, Malachowska B, Zurawska- Klis M, Ferreri C, et al. Lipid profi le changes in erythrocyte membranes of women with diagnosed GDM. PLoS One. 2018;13(9): e0203799. doi: 10.1371/journal.pone.0203799.

Castro- Correia C, Sousa S, Norberto S, Matos C, Domingues VF, Fontoura M, Calhau C. The Fatty Acid Profile in Patients with Newly Diagnosed Diabetes: Why It Could Be Unsuspected. Int J Pediatr. 2017;2017:6424186. doi: 10.1155/2017/6424186.

Bei F, Jia J, Jia YQ, Sun JH, Liang F, Yu ZY, Cai W. Long-term eff ect of early postnatal overnutrition on insulin resistance and serum fatty acid profi les in male rats. Lipids Health Dis. 2015;14:96. doi: 10.1186/s12944-015-0094-2.

Gonzalez VH, Campbell J, Holekamp NM, Kiss S, Loewenstein A, Augustin AJ, et al. Early and LongTerm Responses to Anti- Vascular Endothelial Growth Factor Therapy in Diabetic Macular Edema: Analysis of Protocol I Data. Am J Ophthalmol. 2016;172:72-9. doi: 10.1016/j.ajo.2016.09.012.

Brownlee M. The pathobiology of diabetic complications: A unifying mechanism. Diabetes. 2005;54:1615-25. doi: 10.2337/diabetes.54.6.1615.

Bek T. Diameter changes of retinal vessels in diabetic retinopathy. Curr. Diabetes Rep. 2017;17(10):82. doi: 10.1007/s11892-017-0909-9.

Naruse K, Nakamura J, Hamada Y, Nakayama M, Chaya S, Komori T, et al. Aldose reductase inhibition prevents glucose- induced apoptosis in cultured bovine retinal microvascular pericytes. Exp Eye Res. 2000;71(3):309-15. doi: 10.1006/exer.2000.0882.

Beltramo E, Porta M. Pericyte loss in diabetic retinopathy: mechanisms and consequences. Curr Med Chem. 2013;20(26):3218-25. doi: 10.2174/09298673113209990022.

Tavakol Moghadam S Ms, Najafi SS Ms, Yektatalab S Ph D. The Eff ect of Self- Care Education on Emotional Intelligence and HbA1c level in Patients with Type 2 Diabetes Mellitus: A Randomized Controlled Clinical Trial. Int J Community Based Nurs Midwifery. 2018;6(1):39-46.

Singh M, Kapoor A, Bhatnagar A. Physiological and Pathological Roles of Aldose Reductase. Metabolites. 2021 Sep 27;11(10):655. doi: 10.3390/metabo11100655.

Chang KC, Petrash JM. Aldo- Keto Reductases: Multifunctional Proteins as Therapeutic Targets in Diabetes and Infl ammatory Disease. Adv Exp Med Biol. 2018;1032:173-202. doi: 10.1007/978-3-319-98788-0_13.

Kowluru RA. Diabetic Retinopathy and NADPH Oxidase-2: A Sweet Slippery Road. Antioxidants (Basel). 2021;10(5):783. doi: 10.3390/antiox10050783.

Fujii J, Homma T, Miyata S, Takahashi M. Pleiotropic Actions of Aldehyde Reductase (AKR1A). Metabolites. 2021;11(6):343. doi: 10.3390/metabo11060343.

Balestri F, Moschini R, Mura U, Cappiello M, Del Corso A. In Search of Diff erential Inhibitors of Aldose Reductase. Biomolecules. 2022;12(4):485. doi: 10.3390/biom12040485.

Ahuja P, Waris A, Siddiqui SS, Mukherjee A. Single nucleotide variants of receptor for advanced glycation end-products (AGER) gene: is it a new opening in the risk assessment of diabetic retinopathy?-a review. J Genet Eng Biotechnol. 2022;20(1):17. doi: 10.1186/s43141-022-00297-5.

Salazar J, Navarro C, Ortega Á, Nava M, Morillo D, Torres W, et al. Advanced Glycation End Products: New Clinical and Molecular Perspectives. Int J Environ Res Public Health. 2021;18(14):7236. doi: 10.3390/ijerph18147236.

Mengstie MA, Chekol Abebe E, Behaile Teklemariam A, Tilahun Mulu A, Agidew MM, Teshome Azezew M, et al. Endogenous advanced glycation end products in the pathogenesis of chronic diabetic complications. Front Mol Biosci. 2022;9:1002710. doi: 10.3389/fmolb.2022.1002710.

Shen CY, Lu CH, Wu CH, Li KJ, Kuo YM, Hsieh SC, Yu CL. The Development of Maillard Reaction, and Advanced Glycation End Product (AGE)-Receptor for AGE (RAGE) Signaling Inhibitors as Novel Therapeutic Strategies for Patients with AGE-Related Diseases. Molecules. 2020;25(23):5591. doi: 10.3390/molecules25235591.

Fournet M, Bonté F, Desmoulière A. Glycation Damage: A Possible Hub for Major Pathophysiological Disorders and Aging. Aging Dis. 2018;9(5):880-900. doi: 10.14336/AD.2017.1121.

Oshitari T. Neurovascular Impairment and Therapeutic Strategies in Diabetic Retinopathy. Int J Environ Res Public Health. 2021;19(1):439. doi: 10.3390/ijerph19010439.

Kang Q, Yang C. Oxidative stress and diabetic retinopathy: Molecular mechanisms, pathogenetic role and therapeutic implications. Redox Biol. 2020;37:101799. doi: 10.1016/j.redox.2020.101799.

Bokhary K, Aljaser F, Abudawood M, Tabassum H, Bakhsh A, Alhammad S, et al. Role of Oxidative Stress and Severity of Diabetic Retinopathy in Type 1 and Type 2 Diabetes. Ophthalmic Res. 2021;64(4):613-621. doi: 10.1159/000514722.